最新蜂蜜国家标准GB14963-2011(全文)

 

蜂蜜新国标GB14963-2011
食品安全国家标准--蜂蜜
 
 

前 言


本标准代替 GB 14963-2003《蜂蜜卫生标准》以及 GB 18796-2005《蜂蜜》中的对应 指标。
本标准与 GB 14693-2003 相比主要变化如下:
——修改了范围;
——增加了蜂蜜的定义;
——将原料要求改为蜜源要求,并明确主要的有毒蜜源植物品种名称;
——修改了感官要求;
——修改了理化指标;
——增加了污染物限量、兽药残留限量、农药残留限量要求;
——增加了嗜渗酵母计数要求。
 
 

1 范围
 

本标准适用于蜂蜜,不适用于蜂蜜制品。
 
 

2 术语和定义


蜂蜜
 
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露,与自身分泌物混合后,经充分酿造而成的天然甜 物质。
 
 

3 技术要求


3.1 蜜源要求
 
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露应安全无毒,不得来源于雷公藤( Tripterygium wilfordii Hook.F.)、博落回[ Macleaya cordata (Willd.)R.Br]、狼毒( Stellera chamaejasme L.) 等有毒蜜源植物。

3.2 感官要求

感官要求应符合表 1 的规定。
蜂蜜感官要求

3.3 理化指标

理化指标应符合表 2 的规定。
蜂蜜的理化指标
 
3.4 污染物限量

污染物限量应符合 GB 2762 的规定。

3.5 兽药残留限量和农药残留限量
 
3.5.1 兽药残留限量

兽药残留限量应符合相关标准的规定。

3.5.2 农药残留限量

农药残留限量应符合 GB2763 及相关规定。

3.6 微生物限量

微生物限量应符合表 3 规定。
蜂蜜微生物限量

 

附录A    

嗜渗酵母计数
 

A.1 设备和材料
 
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:

A.1.1 恒温培养箱:25 ℃±1 ℃。
A.1.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。
A.1.3 均质器及无菌均质袋、均质杯或灭菌乳钵。
A.1.4 天平: 感量 0.1g。
A.1.5 无菌试管:18mm×180mm。
A.1.6 无菌吸管:1mL(具 0.01mL 刻度),10mL(具 0.1mL 刻度),或微量移液器及吸 头。
A.1.7 无菌锥形瓶:500mL,250mL。
A.1.8 无菌培养皿:直径 90mm。
A.1.9 无菌 L 型涂布棒:玻璃、塑料或者不锈钢材料制成,棒体直径不应大于 2mm。
A.1.10 显微镜: 10×~100×。

A.2 培养基和试剂
 
A.2.1 30%葡萄糖溶液(pH 6.5±0.5)

A.2.1.1 成分

无水葡萄糖         30.0g
蒸馏水               100mL

A.2.1.2 制法 称量适量葡萄糖,溶解在蒸馏水中,必要时调节 pH 为 6.4 左右。分装后,115 ℃高压灭 菌 20min。

A.2.2 氯硝胺 18%甘油( DG18)琼脂

A.2.2.1 成分
酪蛋白胨                           5.0g
无水葡萄糖                       10.0g
磷酸二氢钾                       1.0g
硫酸镁(MgSO4·H2O)  0.5g
氯硝胺                              0.002g
无水甘油                           200g
琼脂                                 15g
氯霉素                              0.1g
蒸馏水                              1000mL

A.2.2.2 制法 除氯霉素外,将全部成分加热煮沸至完全溶解,如有必要,调节 pH 为 6.4 左右。

加入抗 菌素,121 ℃高压灭菌 15min,最终的 pH 应为 5.6±0.2。灭菌后,立即在 44 ℃~47 ℃水浴 冷却至 50 ℃以下,在每个灭菌平皿中倾注大约 15mL~20mL 培养基,放置在水平的台面上 冷却固化备用。如有必要,可以放在 36 ℃培养箱中过夜,使琼脂表面干燥无水珠。避光保存。

A.3 检验程序

嗜渗酵母检验程序见图 A.1。
嗜渗酵母检验程序
 
A.4 操作步骤
 
A.4.1 样品采集和保存 样品采集后,应尽可能及时检验。若不能及时检验,普通样品应置 2 ℃~5 ℃冰箱保存, 在 24h 内检验。冷冻样品应在 45 ℃以下不超过 15min 或在 2 ℃~5 ℃不超过 18h 解冻。

A.4.2 样品稀释

A.4.2.1 取样

以无菌操作在天平上称取固体或液体检样 25g,加入 30%葡萄糖稀释液 225g,用旋转 刀片式均质器以 8000r/min 均质 1min,或拍击式均质器拍击 2min,制备成 1:10 的均匀稀释 液。如无均质器,则将样品放入加有玻璃珠的无菌锥形瓶中,并充分振荡。

A.4.2.2 梯度稀释

用灭菌吸管吸取 1:10 稀释液 1mL,注入含有 9mL30%葡萄糖稀释液的试管内,置于漩 涡混悬仪上混匀,制备 1:100 的稀释液。 另取 1mL 灭菌吸管,按前操作依次制备 10 倍递增 稀释液,每递增稀释一次,换用 1 支 1mL 灭菌吸管。

A.4.3 涂布和培养

A.4.3.1 根据对检样污染情况的估计,选择 2 个~3 个连续的适宜稀释度,每个稀释度接种 2 个 DG18 琼脂平板。在充分混合稀释液之后,立即在每个平板表面接种 0.1mL,接着用无菌 的 L 型涂布棒进行充分的琼脂表面涂布。注意涂布棒下端不得触碰培养皿的侧缘。进行样品 检验的同时,应同时在 2 个 DG18 琼脂平板表面接种 0.1mL 的稀释液作为空白对照。

A.4.3.2 接种完成后,尽快将全部平板置 25 ℃±1 ℃恒温箱内避光培养。培养时勿翻转培养 皿。为防止出现霉菌的过度蔓延生长掩盖了目标菌落,在培养 48h 后,即开始每日观察平板 上面真菌生长情况。培养 7d 结束。

A.4.4 菌落计数

A.4.4.1 选择菌落数量在 15~150 之间的平板,计数菌落数量。
 
A.4.4.2 典型的嗜渗酵母在 DG18 琼脂平板上呈现为圆形、中心隆起、不透明、边缘整齐的 菌落,直径 1mm~2mm。必要时,可利用低倍显微镜直接观察平板上生长的菌落是否为细 菌菌落。如出现霉菌菌落干扰时,不应计数丝状菌落。

A.4.5 报告 参照 GB 4789.2 的报告方式,以 CFU/g 为单位报告样品中嗜渗酵母的数量。
 

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